PP Systems

可攜式光合作用系統-CIRAS-4

可攜式光合作用系統-TARGAS-1

自動化土壤 CO₂通量系統-CFLUX-1

可攜式CO2氣體分析儀-EGM-5

二氧化碳(CO2)氣體分析儀-SBA-5

高精度二氧化碳氣體分析儀-WMA-5

外部環境感測器與測量腔室

全光譜量子感測器-PAR

TRP-3 溫度/PAR 探針

土壤測量感測器-STP-2

土壤濕度與溫度感測器

土壤呼吸室-SRC-2

冠層同化室-CPY-5

昆蟲呼吸測量室

氧氣感測器

水蒸氣感測器

葉綠素/螢光測量

手持式葉綠素計-CL-01

手持式葉綠素螢光儀-Pocket PEA

進階連續激發式葉綠素螢光儀-Handy PEA+

多功能植物效率分析儀-M-PEA

脈衝調變葉綠素螢光儀-FMS-300

田間可攜式脈衝調變螢光儀-FMS2+

液相/氣相氧氣測量系統

教學型氧電極系統-Oxyview1

液相光合放氧測量系統-Oxytherm+

液相呼吸光合測定系統-Chloroview 1

進階液相氧測量系統-Chlorolab 2 +

大容量液相氧測量系統-Chlorolab 3+

葉片圓盤氧測量系統-Leafview 1

進階葉片圓盤光合呼吸系統-Leaflab 2+


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PP Systems

脈衝調變葉綠素螢光儀

型號:FMS-300

廠牌:PP Systems /Hansatech

原廠網址:https://ppsystems.com/

多功能植物效率分析首選

即時螢光與P700同步測量

突破性延遲螢光深度解析

高靈敏度光學偵測防塵設計

支援複雜實驗協議自動執行


  • 儀器介紹
  • 儀器規格
  • FAQ
儀器介紹

M-PEA(Multi-Function Plant Efficiency Analyser,多功能植物效率分析儀)**結合高品質快速螢光動力學量測與 P700+ 吸收光譜研究,並整合突破性的延遲螢光(Delayed Fluorescence, DF)量測技術,是目前市面上研究植物光合作用效率最全面的系統之一。

系統架構

M-PEA 為實驗室等級量測系統,由控制主機與精密堅固的感測單元組成,感測單元內含所有量測所需的光學發射器與偵測器。系統透過完整的 Windows® 軟體套件(M-PEA+)進行控制,可設計、上傳並執行複雜實驗流程,量測資料透過 USB2.0 連線快速下載至軟體端。控制主機體積精巧、佔用桌面空間小,適合在寸土寸金的實驗室環境中使用。前面板配置電源開關與指示燈、光學感測器連接埠及 4 行 LCD 顯示幕;後面板則提供 12V 直流電源輸入與 USB2.0 連接埠,供連接運行 M-PEA+ 軟體的 Windows® 電腦。

M-PEA 光學感測器

光學感測單元為堅固密封外殼,內含控制所有光源與偵測器所需的精密電子系統。M-PEA-1 感測單元包含高強度紅光光化光源、遠紅光光源、快速螢光偵測器,以及用於 P700+ 吸收量測的調變式發射/偵測器組。M-PEA-2 則在 M-PEA-1 基礎上,額外新增高靈敏度延遲螢光偵測器與葉片吸光度偵測器。所有光學元件皆位於石英視窗後方,有效阻隔灰塵、髒污與濕氣對光學元件的影響。

M-PEA+ 軟體

M-PEA Plus 是專為 M-PEA 系統設計的 Windows® 軟體,用於實驗設計、部署與資料分析,主要包含兩大模組:

  1. 協定編輯器(Protocol Editor):可設計從簡單的 1 秒快速螢光量測,到重複多重閃光量測(結合快速螢光、延遲螢光、P700+ 與相對吸光度),用以探究光系統 I(PSI)與光系統 II(PSII)複合體活性的各種實驗協定。
  2. 資料分析模組:整合多種資料呈現方式,有效呈現樣本螢光訊號中的細微差異;資料可以圖形、表格或雷達圖方式呈現,並可自訂顯示 M-PEA 所量測的 58 項快速螢光參數中的任意組合,亦可匯出為 CSV 格式供外部統計軟體進一步分析。


常見量測參數

Fo:代表光系統 II 天線結構中受激發葉綠素 a 分子的螢光發射,須經充分暗適應方可觀察到真實 Fo 值。

Fm:於持續光照下所得之最大螢光值,需在光強度完全飽和且電子受體 Qa 完全還原時方可稱為最大螢光。

Fv:可變螢光成分,代表光化學淬滅的最大能力,計算方式為 Fm 減去 Fo。

Fv/Fm:廣泛用於指示光系統 II 最大量子效率,是評估植物光合作用表現最敏感的指標之一,數值介於 0~1 之間,健康樣本典型值約為 0.85;數值偏低通常代表植株受到生物性或非生物性逆境影響。

Tfm:達到最大螢光值(Fm)所需的時間,可用於指示樣本逆境(提早達到 Fm)。

Area:Fo 與 Fm 曲線上方面積,與光系統 II 還原側電子受體 Qa 庫容量成正比;若電子傳遞受阻(如除草劑 DCMU 作用),此面積將顯著縮小。


延遲螢光量測

延遲螢光(DF)與快速螢光(PF)源自相同的光系統 II 天線複合體葉綠素分子,本質上是綠色植物、藻類與行光合作用細菌在受光照射後、快速螢光訊號衰退後,短暫時間內釋放出的光。延遲螢光同樣位於紅光/紅外光波段(與快速螢光相同),但其強度比快速螢光低至少兩個數量級,因此需要極高靈敏度的儀器方能量測。


與 PF 相同,DF 訊號特性對 PSII 功能狀態與整體光合反應鏈高度敏感,理論上甚至比 PF 蘊含更多光合作用相關資訊。然而,儘管螢光量測儀器幾乎是每個植物科學實驗室的標準配備,DF 作為研究光合生物的實用方法卻未廣泛普及,主要原因在於 DF 訊號較難擷取,且從這極為複雜的訊號中萃取有價值資訊的難度更高。所幸近年電子工程技術與 DF 理論皆有重大進展,使 DF 逐漸能應用於實務科學研究,這兩項因素的結合正是 M-PEA 得以問世的關鍵。


延遲螢光現象早於 1951 年由 Strehler 與 Arnold 發現,當時他們嘗試利用螢火蟲發光反應量測綠藻 Chlorella 中光誘導 ATP 累積現象,意外發現即使未添加螢光素酶與螢光素,藻類細胞與葉綠體在受光照射後的黑暗環境中仍會出現長時間發光現象。後續研究(如 Arnold and Thompson, 1956)證實此現象普遍存在於葉片、葉綠體與光合細菌等多種光合作用樣本中,且 DF 與光合反應之間的密切關聯已獲多項研究證實,部分研究(Kramer and Crofts, 1996)甚至發現 DF 在特定情況下比快速螢光更為敏感。

P700 吸收量測

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光合電子傳遞鏈由三大蛋白複合體所組成:光系統 II(PSII)、細胞色素複合體(cyt b₆/f)、光系統 I(PSI)。P700 為常用來描述 PSI 反應中心內葉綠素的專有名詞,命名由來是該葉綠素具備最適合光系統作用的吸收波長。葉片受強光照射時,光合電子傳遞鏈的傳遞效率會顯著下降。

透過還原反應釋放的電子,接著會活化酵素氧化還原鐵氧還蛋白 - NADP⁺還原酶,最終促成 NADP 還原與二氧化碳固定作用;此還原動態可透過考茨基誘導曲線的 OJIP 階段進行表徵。P700 發生氧化時,會在 800~850 nm 波長區間產生吸光度上升。

M-PEA 搭載峰值波長 820 nm 的調變式 LED 與高感度光二極體,藉由量測穿透率以偵測 P700 狀態,並可於葉綠素螢光量測期間同步監控 PSI 複合體的吸光度變化。820 nm LED 不具光化活性,因此 M-PEA 可施加高光照強度,卻不會干擾 PSII 複合體運作。故此儀器能夠同時量測葉綠素螢光與 820 nm 穿透訊號,得以於考茨基誘導過程中,針對光合電子傳遞鏈兩端的電子傳遞動態展開研究。M-PEA 另內建遠紅光光源,可用於優先激發 PSI 複合體。

電子還原反應會透過 PSII 驅動的跨系統電子傳遞鏈進行,電子來源為水的光水解反應。M-PEA 採用經光學濾波處理的調變 820 nm LED,實現高品質的 P700⁺吸光度量測;儀器運用高速響應 PIN 光二極體搭配 16 位元類比數位轉換器,以低雜訊方式記錄 P700⁺活性,達成優異的訊雜比(S/N 比)。

儀器規格
硬體規格
光源模組

聚焦式超高亮度紅光 LED 陣列,搭配近紅外短波截止濾片;峰值波長 650 nm,譜線半寬 22 nm

顯示螢幕

8 列 × 20 字元 LCD 顯示器

樣品處最大光強度

最高 3500 μmol m⁻² s⁻¹

偵測器

高速響應 PIN 光電二極體,搭配 RG9 長波通濾片

電子系統

16 位元微處理器、12 位元解析度;類比數位轉換 (A/D) 取樣速率 10 μsec;8 位元數位類比轉換器 (DAC) 用於光源控制

記錄長度

0.1 ~ 300 秒

記憶體

512K 電池備份隨機記憶體;最多可儲存 1000 筆 1 秒完整曲線量測數據

葉片夾

20 個射出成型夾具,附鍍銀定位環、4 mm 樣品開孔與滑動遮光閘板

電池充電器

內建切換式充電器,輸入 8–13.5V(標稱 12V 輸入)

電池

3 顆充電式鎳氫電池,3.6 V、1.8 Ahr

通訊介面

USB2.0

尺寸/重量

長 170 mm × 寬 85 mm × 深 40 mm/重量:565 g

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可量測參數
OJIP 原始資料

tFm、Area、Fo、Fm、Fv

標準化參數

Fo/Fm、Fv/Fm、Fv/Fo

Vj = (Fj−Fo)/(Fm−Fo)

Vi = (Fi−Fo)/(Fm−Fo)

單反應中心專屬通量

ABS/RC、DIo/RC、TRo/RC、ETo/RC、REo/RC

單位截面積 CSo 表觀通量

ABS/RC、DIo/RC、TRo/RC、ETo/RC、REo/RC

部分效能參數

Γ(RC)/(1−Γ(RC))、Φ(Po)/(1−Φ(Po))、Ψ(Eo)/(1−Ψ(Eo))、PI(abs)、Δ(Ro)/(1−Δ(Ro))

時間標記點

Ft1、Ft2、Ft3、Ft4、Ft5

分段曲線面積

Fo 至 Ft1、Ft1 至 Ft3、Ft1 至 Ft4、Ft1 至 Ft5、Ft3 至 Ft4、Ft4 至 Ft5、Ft5 至 Fm

斜率與積分參數

dVg/dto、dV/dto、Sm = Area/Fv、N = Sm/Ss、Sm/tFm

產率(通量比值)

TRo/ABS = Φ(Po)

ETo/TRo = Ψ(Eo)

ETo/ABS = Φ(Eo)

REo/ETo = Δ(Ro)

REo/ABS = Φ(Ro)

單位截面積 CSm 表觀通量

(ABS/CSm)~Fm、DIo/CSm、TRo/CSm、ETo/CSm、REo/CSm

整體效能、驅動力與速率參數

PI(total)、DF(abs)、DF(total)、kP/ABS * kF、kN/ABS * kF

使用者自訂參數

開放 3 組使用者手動輸入數值

FAQ

Q1:什麼是 M-PEA 多功能植物效率分析儀?

A:M-PEA 是一套結合快速螢光動力學、P700+ 調變式吸收量測與延遲螢光(DF)技術的實驗室級系統,可提供目前市面上最全面的植物光合作用效率研究工具之一。

Q2:M-PEA-1 與 M-PEA-2 有什麼差異?

A:M-PEA-1 具備快速螢光與 P700+ 調變式吸收量測功能;M-PEA-2 則在此基礎上,額外新增延遲螢光(Delayed Fluorescence)與葉片吸光度量測功能,提供更完整的光合機能分析。

Q3:什麼是 P700 吸收量測?

A:P700 代表光系統 I(PSI)反應中心內的葉綠素。M-PEA 使用峰值波長 820nm 的調變式 LED 監測 P700 氧化造成的吸光度變化,藉此研究 PSI 複合體的活性。

Q4:什麼是延遲螢光(Delayed Fluorescence)?

A:延遲螢光是植物、藻類與光合細菌在受光照射、快速螢光訊號衰退後,短暫時間內釋放出的微弱光訊號,其強度比快速螢光低至少兩個數量級,需要高靈敏度儀器方能偵測,但蘊含豐富的光合生理資訊。

Q5:M-PEA 為何能同時量測螢光與 P700 吸收而不互相干擾?

A:由於監測 P700 所使用的 820nm LED 並非光化光,不會激發光合反應,因此 M-PEA 可在使用高強度光化光源進行快速螢光量測的同時,同步監測 820nm 波段吸光度,不會干擾 PSII 複合體活性。

Q6:M-PEA 的協定編輯器可以做什麼?

A:協定編輯器讓使用者透過 M-PEA+ 軟體設計實驗流程,範圍可從簡單的 1 秒快速螢光量測,到結合快速螢光、延遲螢光、P700+ 與相對吸光度的重複多重閃光量測協定。

Q7:M-PEA 可以測得多少項參數?

A:M-PEA 可測得多達 58 項快速螢光相關參數,涵蓋 OJIP 數據、正規化數據、能量通量、部分表現指標、時間標記與斜率積分等多面向分析。

Q8:M-PEA 資料如何傳輸與分析?

A:M-PEA 透過 USB2.0 連接 Windows® 電腦,搭配 M-PEA+ 軟體進行圖形化、表格化或雷達圖分析,資料亦可匯出為 CSV 格式,供外部統計軟體進一步處理。

Q9:M-PEA 適合哪些應用場景?

A:適合實驗室與田間環境中,針對植物光合作用效率、光系統 I 與光系統 II 活性、電子傳遞鏈機能,以及植物逆境生理反應等主題進行深入的學術與商業研究。

Q10:M-PEA 一次量測最長可以記錄多久?

A:M-PEA 單次記錄時間可設定為 0.001~300 秒,且每個協定最多可重複執行 100 次量測。